Сравнительная нейроморфология трех видов пресноводных мшанок Cristatella mucedo, Plumatella repens и Fredericella sultana : Bryozoa, Phylactolaemata

  • Автор:
  • Специальность ВАК РФ: 03.02.04, 03.03.04
  • Научная степень: Кандидатская
  • Год защиты: 2014
  • Место защиты: Санкт-Петербург
  • Количество страниц: 130 с. : ил.
  • бесплатно скачать автореферат
  • Стоимость: 250 руб.
Титульный лист Сравнительная нейроморфология трех видов пресноводных мшанок Cristatella mucedo, Plumatella repens и Fredericella sultana : Bryozoa, Phylactolaemata
Оглавление Сравнительная нейроморфология трех видов пресноводных мшанок Cristatella mucedo, Plumatella repens и Fredericella sultana : Bryozoa, Phylactolaemata
Содержание Сравнительная нейроморфология трех видов пресноводных мшанок Cristatella mucedo, Plumatella repens и Fredericella sultana : Bryozoa, Phylactolaemata
Содержание
Введение
Благодарности
Г лава 1. Обзор литературы
1.1.История развития взглядов на филогенетическое положение мшанок в
системе Metazoa
1.2.Общая организация пресноводных мшанок
1.3. Особенности пищевого поведения пресноводных мшанок
1.4. История изучения нервной системы пресноводных мшанок
Глава 2. Материал и методы
2.1 Объекты исследования
2.2 Гистологические методы
2.3 Методы флуоресцентного гистохимического и непрямого
иммуногистохимического окрашивания
2.4Метод выявления моноаминов
2.5 Методы электронной микроскопии
2.6 Список использованных сокращений
Глава 3. Морфологические особенности представителей Phylactolaemata

Глава 4. Строение нервной системы пресноводных мшанок С. mucedo, P. repens и F. sultana
4.1 Центральная нервная система
4.2 Нервная система лофофора
4.3 Нервная система стенки тела полипида (интроверта) и кишечника

4.4 Нервная система подошвы С. mucedo
Глава 5. Серотонинергическая нервная система исследованных видов
Глава 6. ГМЕРамидергическая нервная система исследованных видов
6.1 ГМКГамидергические элементы ЦНС
6.2 ГМИРамидергические элементы нервной системы лофофора
6.3 ГМКРамидергические элементы нервной системы интроверта и
стенки ци стида
6.4 ГМЯРамидергические элементы нервной системы кишечника зооидов
Глава 7. Катехоламинергические элементы нервной системы С. тисес1о

Глава 8. Ультраструктурное строение щупалец С. тисес1о
Глава 9. Обсуждение результатов
Заключение
Выводы
Список цитируемой литературы

Введение
Нервная система - одна из основных интегрирующих и регуляторных систем организма. За счет наличия большого количества разнообразных рецепторных элементов, нервных центров и стволов организм происходит постоянная постоянно получает и обрабатывает информацию о состоянии окружающей среды, таким образом регулируя свое поведение и физиологическое состояние. Координируя работу различных функциональных систем организма, нервная система также выполняет интегративную функцию.
Свойства и функции нервной системы определяют ее морфологическую консервативность и пластичность. Существенные изменения в строении органов, вызванные, например, переходом организма к существованию в другой среде, влекут за собой изменения в строении нервной системы. С другой стороны, нервная система является эволюционно консервативной, так как сохраняет признаки, присущие предковым организмам.
Такое сочетание консервативности и пластичности позволяет рассматривать черты строения нервной системы в качестве удобных признаков для выявления филогенетических связей между различными группами организмов (Orrhage, Müller, 2005) и эволюции их личинок (Nielsen, 2005). В некоторых случаях характеристики строения нейромышечной системы послужили основой для понимания эволюционных тенденций внутри некоторых крупных групп беспозвоночных животных, например, Lophotrochozoa (Hay-Schmidt, 2000; Wanninger, 2008, 2009). Изучение особенностей строения нервной системы важно также и с точки зрения функциональной морфологии (Gilmour, 1978; Nielsen, Riisgard, 1998; Riisgard et al., 2000, 2004).
Мшанки (тип Bryozoa) широко распространены по земному шару, они встречаются как в морских, так и в пресных водах. Колония мшанок состоит

Дополнительно нами была проведена окраска мышечных элементов колоний. Для визуализации мышечного актина колонии помещали в раствор TRITC-фаллоидина (разведение 1:100) на однократном буфере PBS (рН=7.4) на 1-2 часа, после чего отмывали в том же буфере (трижды по 10-15 мин).
Ядра клеток были подкрашены раствором красителя HOECHST 33258 (Hl398, Invitrogen) на однократном PBS в течение 15 мин.
После всех перечисленных выше процедур полипиды были отделены от колоний и заключены либо в 80% глицерин на PBS, либо в 97% TDE (Staudt et al., 2007).
Обработанный таким образом материал изучали с помощью конфокального инвертированного микроскопа Leica TCS SP 5 (ЦКП «Хромас», СПбГУ, Санкт-Петербург) или прямого конфокального микроскопа Leica TCS SP 5 (ЦКП «Таксон», ЗИН РАН) и конфокального микросокпа Leica TCS SPE (Institut fiir Evolutionsbiologie und Ökologie, Universität Bonn, Germany).
2.4 Метод выявления моноаминов
Для выявления рецепторных элементов в лофофоре и уточнения их расположения нами был использован метод метод конденсации с глиоксиловой кислотой (Sclawny et al., 1991). Этот метод позволяет выявлять различные моноамины, широкораспространенных в различных группах беспозвоночных. Необходимо отметить, что pH раствора был подобран таким образом, чтобы выявить катехоламинергические элементы нервной системы, которые у многих беспозвоночных выполняют сенсорные функции. Катехоламинергические элементы в лофофоре удалось выявить только у
C. mucedo.
Полипиды из анестезированных колоний переносились в 9,2% раствор глиоксиловой кислоты (на 10% сахарозе) на полчаса, +4° С. Затем полипиды были расправлены на покровном стекле и высушены. После этого препараты

Рекомендуемые диссертации данного раздела