Распространенность и биологические свойства стафилококков, колонизирующих полость рта при кариесе и пародонтите

  • Автор:
  • Специальность ВАК РФ: 03.02.03
  • Научная степень: Кандидатская
  • Год защиты: 2011
  • Место защиты: Волгоград
  • Количество страниц: 160 с. : 2 ил.
  • бесплатно скачать автореферат
  • Стоимость: 250 руб.
Титульный лист Распространенность и биологические свойства стафилококков, колонизирующих полость рта при кариесе и пародонтите
Оглавление Распространенность и биологические свойства стафилококков, колонизирующих полость рта при кариесе и пародонтите
Содержание Распространенность и биологические свойства стафилококков, колонизирующих полость рта при кариесе и пародонтите

ОГЛАВЛЕНИЕ

ВВЕДЕНИЕ
1.0. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
1.1. Видовое разнообразие и биологические свойства
микрофлоры полости рта
1.2. Роль стафилококков, колонизирующих полость рта в норме
и при патологии
2.0. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
2.1. Методы клинического и лабораторного обследования
пациентов
2.2. Методы микробиологического исследования полости рта
2.3. Определение плазмокоагулазной активности стафилококков
2.4. Определение гемолитической активности
2.5. Определение лецитиназной активности
2.6. Определение адгезивных свойств стафилококков
2.7. Определение нуклеазной активности штаммов стафилококка
2.8. Определение гиалуронидазной активности
2.9. Определение каталитической активности стафилококков
2.10. Определение чувствительности бактерий Staphylococcus
к антимикробным препаратам
2.11. Определение факторов персистенции
2.12. Определение индекса вирулентности
2.13. Выделение плазмидной ДНК
2.14. Амплификация с произвольными праймерами
2.15. Амплификация со специфическими праймерами, детектирующими фрагменты факторов патогенности
2.16. Статистические исследования
3.0. НЕКОТОРЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ СТОМАТОЛОГИЧЕСКОГО СТАТУСА ЛИЦ ОБСЛЕДУЕМЫХ ГРУПП
4.0. КОЛОНИЗАЦИЯ СТАФИЛОКОККАМИ ПОЛОСТИ РТА
ЛИЦ ОБСЛЕДУЕМЫХ ГРУПП
4.1. Стафилококки в биоценозе полости рта у лиц, страдающих
кариесом
4.2. Колонизация стафилококками полости рта больных
пародонтитом

5.0. БИОЛОГИЧЕСКИЕ СВОЙСТВА СТАФИЛОКОККОВ
5.1. Биологические свойства S. aureus
5.1.1. Адгезивная активность S. aureus
5.1.2. Активность каталазы S. aureus лиц обследуемых групп
5.1.3. Активность плазмокоагулазы S. aureus
5.1.4. Лецитиназная активность S. aureus, выделенных у больных
лиц обследуемых групп 80!
5.1.5. Нуклеазная активность.S. aureus
5.1.6. Активность гиалуронидазы S. aureus
5.1.7. Гемолитическая активность стафилококков 81!
5.2. Биологические свойства КОС, выделенных у лиц обследуемых групп
5.3. Факторы.персистенции стафилококков, выделенных
у лиц обследуемых групп
5.4. Показатели вирулентности стафилококков, колонизирующих полость рта лиц обследуемых групп
6.0. ОЦЕНКА АНТИБИОТИКОРЕЗИСТЕНТНОСТИ СТАФИЛОКОККОВ, ВЫДЕЛЕННЫХ У ЛИЦ ОБСЛЕДУЕ МЫХ ГРУПП
6.1. Метициллинрезистентные стафилококки, выделенные у лиц обследуемых групп-
7.0. ХАРАКТЕРИСТИКА ПЛАЗМИДНОГО ПРОФИЛЯ И ДНК СТАФИЛОКОККОВ, КОЛОНИЗИРУЮЩИХ ПОЛОСТЬ РТА БОЛЬНЫХ КАРИЕСОМ И ПАРОДОНТИТОМ
7.1. ПЦР-типирование штаммов
7.2.. Определение потенциала патогенности S. aureus
7.3. Амплификация с произвольными праймерами
8.0. ФАКТОРЫ, ВОЗДЕЙСТВУЮЩИЕ НА ПЕРСИСТЕТНЫЙ ПОТЕНЦИАЛ СТАФИЛОКОККОВ, ВЕГЕТИРУЮЩИХ В ПОЛОСТИ РТА ЛИЦ ОБСЛЕДУЕМЫХ ГРУПП
ОБСУЖДЕНИЕ ПОЛУЧЕННЫХ РЕЗУЛЬТАТОВ
ВЫВОДЫ
УКАЗАТЕЛЬ ЛИТЕРАТУРЫ
ВВЕДЕНИЕ
Актуальность темы
В мире ежегодно, согласно данным ВОЗ, болеют более 1 млн человек кариесом и пародонтитом, распространенность которых является высокой и в экономически развитых странах составляет в среднем 15-20 человек на 1000 населения (B.C. Иванов, 1998; Э.М. Кузьмина, 2001; ВОЗ, 2005; А.Ч. Пашаев, 2008).
Влияние неблагоприятной экологической ситуации, ухудшение здоровья населения, агрессивное распространение бактериальной, вирусной и микотической флоры, ее резистентность к фармакологическому воздействию существенно меняют течение болезни, приводя к развитию более тяжелых форм с непрерывным рецидивирующим течением, с выраженными микробно-воспалительными проявлениями (Ю.Л. Шевченко с соавт., 2001; О.Г. Елисютина с соавт., 2006; Е.В. Матисова, 2010).
В настоящее время рост числа заболеваний, вызываемых условно-патогенными микроорганизмами (УПМ), становится серьезной проблемой клинической стоматологии и обусловлен частым носительством бактериальных патогенов (В.В. Воронин с соавт., 2001; Н.М. Каргальцева, 2001; И.М. Рабинович с соавт., 2002; В.Г. Абрамов, 2007; В.A. Cunha, 2005).
Среди возбудителей инфекционных заболеваний с различными клиническими проявлениями большое место принадлежит стафилококкам, которые на протяжении последнего столетия являются наиболее значимыми оппортунистическими патогенами в медицинской практике (Л.Н.Терновская, 1991; С.В. Прозоровский, 1998; A.A. Алексеев с соавт., 1999; В.П. Яковлев с соавт., 1999; В.Б. Белобородов с соавт., 2003; С.А. Осиян, 2005).
Стафилококки представляют собой большую гетерогенную группу грамположительных микроорганизмов, которые делятся на коагулазо-положительные и коагулазоотрицательные. Среди коагулазоположительных

0=2 мм, НИЦФ, г.Санкт-Петербург) на агар в виде бляшек. Продукцию гемолизина оценивали после инкубации в термостате через 18-24 часа по появлению зоны гемолиза. В случае, когда зона гемолиза отсутствовала, штамм расценивался как негемолитический. Степень продукции гемолизина оценивалось по диаметру зоны гемолиза вокруг бляшек, выросших на КА. Штаммы, для которых эта величина составила 4 мм, оценивались как обладающие низкой гемолитической активностью. Зона гемолиза равная 5-8 мм свидетельствовала о средней гемолитической активности, 9-12 мм - о высокой.
2.5. Определение лецитиназной^ активности
Для определения лецитоветиллазы (лецитиназы) использовали 1,8% питательный агар, содержащий 7,5 г 14аС1 на. 100 мл среды и 1% яичного желтка (Г.Н. Чистович). Одним из компонентов яичного желтка является лецитовителлин, который является субстратом для фермента лецито-витиллазы (лецитиназы), относящегося к группе липаз.
Из суточных культур стафилококков готовили- 2 млрд. взвесь в дистиллированной воде. Инокулят наносили мерной петлей (№2, 0=2мм, НИЦФ, г.Санкт-Петербург) на агар. Посевы инкубировали в термостате в течение 48 часов при 37°С. Отсутствие венчика свидетельствовало о том, что данный штамм не вырабатывает соответствующий фермент. О наличии лецитиназной активности свидетельствовало наличие радужного венчика вокруг зоны роста. О количественном значении данного признака свидетельствовали размеры диаметра венчика. При диаметре венчика 4 мм штамм расценивали как обладающий низкой лецитиназной активностью, 5-7 мм - средней, при 8-10 - высокой.

Рекомендуемые диссертации данного раздела